核酸探针技术

第一节　核酸探针技术

化学及生物学意义上的探针（Probe），是指与特定的靶分子发生特异性相互作用，并可被特殊的方法探知的分子。抗体－抗原、生物素－抗生物素蛋白、生长因子－受体的相互作用都可以看做是探针与靶分子的相互作用。

核酸探针技术的原理是碱基配对。互补的两条核酸单链通过退火形成双链，这一过程称为核酸杂交。核酸探针是指带有标记物的已知序列的核酸片段，它能和与其互补的核酸序列杂交，形成双链，所以可用于核酸样品中特定基因序列的检测。每一种病原体都具有独特的核酸片段，通过分离和标记这些片段就可制备出探针，用于疾病的诊断等研究。

一、核酸探针的种类与用途

1.按来源及性质划分　可将核酸探针分为基因组DNA探针、cDNA探针、RNA探针和人工合成的寡核苷酸探针等几类。作为诊断试剂，较常使用的是基因组DNA探针和cDNA探针。其中，前者应用最为广泛，它的制备可通过酶切或聚合酶链反应（PCR）从基因组中获得特异的DNA后将其克隆到质粒或噬菌体载体中，随着质粒或噬菌体的增殖而获得大量高纯度的DNA探针。将RNA进行反转录，所获得的产物即为cDNA探针适用于RNA病毒的检测。cDNA探针序列也可克隆到质粒或噬菌体中，以便大量制备。将RNA标记也可作为核酸分子杂交的探针。但由于来源极不方便，且RNA极易被环境中大量存在的核酸酶降解，操作不便，因此应用较少。用人工合成的寡聚核苷酸片段作为核酸杂交探针应用十分广泛，可根据需要随心所欲合成相应的序列，可合成仅有几十个bp的探针序列，对于检测点突变和小段碱基的缺失或插入尤为适用。

2.按标记物划分　有放射性标记探针和非放射性标记探针两大类。放射性标记探针用放射性同位素作为标记物。放射性同位素是最早使用，也是目前应用最广泛的探针标记物。常用同位素有32P，³H、³⁵S。其中，以32P应用最普遍。放射性标记的优点是灵敏度高，可以检测到Pg级；缺点是易造成放射性污染，同位素半衰期短，不稳定，成本高等。因此，放射性标记的探针不能实现商品化。目前，许多实验室都致力于发展非放射性标记的探针。

目前应用较多的非放射性标记物是生物素（biotin）和地高辛（digoxigenin）。二者都是半抗原。生物素是一小分子水溶性维生素，对亲合素有独特的亲和力，两者能形成稳定的复合物，通过连接在亲合素上的显色物质（如酶、荧光素等）进行检测。地高辛是一种类醇半抗原分子，可利用其抗体进行免疫检测，原理类似于生物素的检测。地高辛标记核酸探针的检测灵敏度可与放射性同位素标记的相当，而特异性优于生物素标记，其应用日益广泛。

核酸探针技术是目前分子生物学中应用最广泛的技术之一，是定性或定量检测RNA或DNA序列的有力工具。核酸探针可用以检测任何特定病原微生物，并能鉴别密切相关的毒（菌）株和寄生虫。目前，各种常见病毒病的诊断和研究都已应用到核酸探针技术，这方面的研究报道数以万计且与日俱增。但该项技术的操作毕竟比常见方法复杂，费用较高，在动物检疫中尚未推广。多在实验室内对病原作深入研究时使用。

二、核酸探针的标记

（一）放射性同位素标记法

常将放射性同位素如³²P连接到某种脱氧核糖核苷三磷酸上作为标记物，然后通过切口平移法标记探针。

切口平移法（nick translation）是利用大肠杆菌DNA聚合酶I（E.coli DNA polymerase I）的多种酶促活性将标记的dNTP掺人到新型DNA链中去，形成均匀标记高比活DNA探针。其操作方法如下。

1.取1μgDNA溶于少量无菌双蒸水中，加入5μl距离大约10×切口平移缓冲液（0.5mol/L Tris－HCl，pH7.2；0.1mol/L MgSO₄；1mmol/L二硫苏糖醇；500μg/ml牛血清白蛋白），加入除标记物（如a－³²P－Datp）外的其他3种dNTP（如dCTP、dGTP、dTTP）溶液、20mmol/L溶液各1μl。

2.加入100uci（10μl）标记物溶液，加入无菌双蒸水至终体积为46.5μl，混匀，加入0.5μl稀释的DnaseI溶液，混匀；加入1μl（约5单位）E.coli DNA polymeraseI，混匀。

3.置14℃～16℃反应1～2h。

（二）非放射性标记法

可将生物素、地高辛连接在dNTP上，然后像放射性标记一样用酶促聚合法掺入到核酸链中制备标记探针。也可让生物素、地高辛等直接与核酸进行化学反应而连接上核酸链。其中，生物素的光化学标记法较为常用。其原理是利用能被可见光激活的生物素衍生物——光敏生物素，光敏生物素与核酸探针混合后，在强RNA的标记，探针可在－20℃下保存8～18个月。具体操作方法如下。

1.将双链DNA变性或用NaOH处理形成缺口，单链DNA或RNA毋需处理，将核酸样品溶于水。

2.暗室下在微量离心管中加入10μl DNA，lmg/L光敏生物素20μl，加水至50μl，混匀。

3.冰浴中打开离心管盖，在300～500W灯下照射10min（液面距灯泡10cm）。

4.加入100μl0.1mol/L Tris－HCl，pH8.0，加入100μl 2－丁醇抽提两次，离心，弃上层。

5.乙醇沉淀核酸探针；用70%乙醇漂洗，真空抽干，备用。

除上述标记法外，探针的制备和标记还可通过PCR反应直接完成。

三、核酸杂交

杂交技术有固相杂交和液相杂交之分。固相杂交技术目前较为常用，先将待测核酸结合到一定的固相支持物上，再与液相中的标记探针进行杂交。固相支持物常用硝酸纤维素膜（nitrocellulose filter membrane，简称NC膜）或尼龙膜（nylon membrane）。

固相杂交包括膜上印迹杂交和原位杂交。前者包括三个基本过程：第一，通过印迹技术将核酸片段转移到固相支持物上；第二，用标记探针与支持物上的核酸片段进行杂交；第三，杂交信号的检测。

用探针对细胞或组织切片中的核酸杂交并进行检测的方法称之为核酸原位杂交。其特点是靶分子固定在细胞中，细胞固定在载玻片上，以固定的细胞替代纯化的核酸，然后将载玻片浸入溶有探针的溶液里，探针进入组织细胞与靶分子杂交，而靶分子仍固定在细胞上，据此可以判定有无该病原体的感染等。原位杂交不需从组织中提取核酸，对于组织中含有极低的靶序列也有极高的敏感性，在临床应用上有独特的意义。

近年来液相杂交技术有所发展。液相杂交与固相杂交的主要区别是不用纯化或固定靶分子，探针与靶序列直接在溶液里作用。液相杂交步骤有所简化，速度有所提高，增加了特异性和敏感性，但与临床诊断所要求的特异性和敏感性还有一定的距离。

各种杂交技术中，膜上印迹杂交技术应用最为广泛。

（一）核酸印迹技术

1.斑点印迹（dot－blot）将待测核酸样品变性后直接点样在膜上，称之为斑点印迹。为使核酸牢固结合在膜上，通常还将点样后的膜进行80℃真空烘烤2h。应用斑点印迹技术，可在一张膜上同时进行多个样品的检测，操作简便、快速，在临床诊断中应用较广。适合进行特定基因的定性及定量研究，但不能鉴定所测基因的分子量。

2.Southem印迹（southern blot）这是指将DNA片段经琼脂糖凝胶电泳分离后转移到固相支持物上的过程。常规处理如下，先用限制性内切酶对DNA样品进行酶切处理，经琼脂糖凝胶电泳将所得DNA片段按分子量大小分离，接着对凝胶进行变性处理，使双链DNA解离成单链，并将其转移到NC膜或其他固相支持物上，转移后各DNA片段的相对位置保持不变。用探针与经Southern印迹处理的DNA样品杂交，可鉴定待测DNA的大小、进行克隆基因的酶切图谱分析、基因组基因的定性及定量分析、基因突变分析及限制性片段长度多态性分析（RFLP）等。

Southern印迹的操作方法有3种。

（1）毛细管转移（或虹吸印迹）：这是一种传统方法，进行毛细管转移时，DNA片段由液流携带从凝胶转移到固相支持物表面。安放装置时，在转移槽中央的平台上由下到上依次叠放变性凝胶、滤膜、一叠干的吸水纸巾；凝胶与转移缓冲液通过纸桥连接；滤膜上的纸巾吸水而产生并维持毛细管作用，液体由于毛细管作用抽吸通过凝胶，并将DNA片段携带聚集在滤膜上。DNA片段的大小和琼脂浓度决定了转移的速度。小片段DNA（＜1kb）在1h内可从0.7%琼脂糖凝胶上几乎定量转移，而大片段DNA的转移效率较低，如大于15kb的DNA片段需要18h而转移尚不安全。

（2）电转移：利用电场的电泳作用将凝胶中的DNA转移到固相支持物上，可达到简单、迅速、高效的目的。一般2～3h内可转移完毕。电转法不宜采用NC膜，因为NC膜结合化学活化膜和正电荷修饰的尼龙膜。此外，电转过程中转移体系的温度升高，必须使用循环冷却水。商业化的电转仪一般附有冷却设备，也可在冷室中进行。具体操作时，加入转移缓冲液后通电进行电转。

（3）真空印迹法：这是近年来发展起来的一种简单、快速、高效的DNA和RNA印迹法。其基本原理是利用真空作用将转膜缓冲液从凝胶上层的容器抽到下层，凝胶中的核酸片段将随缓冲液移置到凝胶下面的固相支持物上。这一方法的最大优点是快速高效，可在转膜的同时进行DNA的变性与中和，30min至1h可完成，适合检疫工作的要求。已有商业化的真空转移仪提供，可按商品使用说明进行操作。

Southern印迹后的滤膜仍需进行固定处理，对NC膜可用80℃真空抽干2h，对尼龙膜还可用短波紫外线（波长254nm）照射几分钟。

3.Northern印迹（Northern blot）Northern印迹是指将RNA片段变性及电泳分离后，转移到固相支持物上的过程。RNA样品经Northern印迹后进行杂交反应可鉴定其中特异mRNA分子的量与大小。Northern印迹的方法与Southern印迹基本相同，可参照进行。但RNA的变性方法与DNA不同。DNA样品可先通过凝胶电泳进行分离，再用碱处理凝胶使DNA变性。而RNA不能用碱变性，因为碱会导致RNA水解。因此，在Northem印迹前，须进行RNA变性电泳，在电泳过程中使RNA解离形成单链分布在凝胶上，再进行印迹转移。

（二）杂交反应的基本过程

包括预杂交、杂交和漂洗几步操作。预杂交的目的是用非特异性DNA分子（鲑精DNA或小牛胸腺DNA）及其他高分子化合物（Denhart’s溶液）将待测核酸分子中的非特异性位点封闭，以避免这些位点与探针的非特异的结合。杂交反应是使单链核酸探针与固定在膜上的待测核酸单链在一定温度和条件下杂交的标记探针，以避免干扰特异性杂交信号的检测。膜洗净后，将继续进行杂交信号的检测。

以放射性标记探针与固定在NC膜上的核酸进行杂交为例，杂交反应操作如下：

1.所需试剂配制

SSC溶液（20×）：聚蔗糖5g，聚乙烯吡咯烷酮5g，牛血清白蛋白（BSA）5g加水至500ml。

预杂交液：6×SSC，5×Denhardt’s溶液，0.5% SDS，100μg/ml经变性或断裂成片的鲑精DNA。

2.基本过程

（1）将含靶核酸的NC膜漂浮于6×SSC液面，使其由下至上完全湿润，并继续浸泡2min。

（2）将湿润NC膜装入塑料袋中，按0.2ml/cm²的量加入预杂交液，尽可能挤出气泡，将袋封口，置68℃水浴1～2h或过夜。

（3）将双链探针做变性处理使成单链，即于100℃加热5min，然后立即置冰浴使骤冷。

（4）从水浴中取出杂交袋，剪去一角，将单链探针加入，尽可能将袋内空气挤出去，重新封口，并将杂交袋装入另一个干净的袋内，封闭，以防放射性污染；将杂交袋浸入68℃水浴，温育8～16h。

（5）取出杂交袋，剪开，取出滤膜迅速浸泡于大量2×SSC和0.5% SDS中，室温振荡5min，勿使滤膜干燥。

（6）将NC膜移入一盛大量2×SSC和0.1% SDS溶液的容器中，室温漂洗15min。

（7）将NC膜移入一盛有大量0.1×SSC和0.5% SDS溶液的容器中，37℃漂洗30min至1h。

（8）将NC膜移入一盛有新配0.1×SSC和0.5% SDS溶液的容器中，68℃漂洗30min至1h。

（9）取出滤膜，用0.1×SSC室温稍稍漂洗，然后置滤纸上吸去大部分液体，做杂交信号的检测。

（三）杂交信号的检测

当探针是放射性标记时，杂交信号的检测通过放射自显影进行。即利用放射线在X光片上的成影作用来检测杂交信号。操作时，在暗室内将滤膜与增感X光片依序放置暗盒中，再将暗盒置－70℃，曝光适当时间，取出X光片，进行显影和定影处理；对于非放射性标记的探针，则需将非放射性标记物与检测系统偶联，再经检测系统的显色反应来检疫杂交信号。以地高辛的碱性磷酸酶检测反应为例，地高辛（Dig）是一种半抗原，杂交反应结束后，可加入碱性磷酸酶标记的抗Dig抗体，使之在膜上的杂交位点形成酶抗体－Dig复合物，再加入酶底物如氮蓝四唑盐（NBT）和5－溴－3－吲哚酚磷酸甲苯胺盐（BCIP），在酶促作用下，底物开始显蓝色。其基本反应程序类似ELISA，杂交信号的强弱，通过底物显色程序的深浅、有无来确定。