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琼脂糖凝胶电泳检测产物

时间:2022-03-08 理论教育 版权反馈
【摘要】:琼脂糖凝胶电泳是重组DNA研究中常用的技术,可用于分离、鉴定和纯化DNA片段。相反,在一定浓度的琼脂糖凝胶中,不同大小的DNA片段的迁移率也是不同的。本实验中用GoldViewTM新型核酸染料代替溴化乙锭,采用琼脂糖电泳检测DNA时,GoldViewTM与核酸结合后能产生很强的荧光信号,其灵敏度与EB相当,使用方法与之完全相同。将琼脂糖凝胶放入盛有1×TAE电泳缓冲液的水平电泳槽,加样孔一侧靠近电泳槽负极,电泳缓冲液没过凝胶1~2mm为宜。

实验二 琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物

一、实验目的

1.了解琼脂糖凝胶电泳技术分离DNA的基本原理。

2.掌握利用电泳技术分离PCR产物。

3.掌握如何利用凝胶成像仪观察、记录并分析电泳结果。

二、实验原理

琼脂糖凝胶电泳是重组DNA研究中常用的技术,可用于分离、鉴定和纯化DNA片段。DNA分子在碱性环境中(pH 8.3)带负电荷,外加电场作用下,向正极泳动。DNA片段由于不同大小、不同形状和不同构象,有不同的迁移率,所以可通过电泳使其分离。凝胶中的DNA可与荧光染料溴化乙锭(EB)结合,在紫外灯下可看到荧光条带,借此可分析实验结果。

影响DNA片段琼脂糖凝胶电泳的几个因素如下。

(1)DNA分子的大小 线性DNA分子的迁移率与其相对分子质量的对数值成反比。将未知DNA的迁移距离与已知分子大小的DNA标准物的电泳迁移距离进行比较,即可计算未知DNA片段的大小。

(2)琼脂糖浓度 一定大小的DNA片段在不同浓度的琼脂糖凝胶中的迁移率是不同的。相反,在一定浓度的琼脂糖凝胶中,不同大小的DNA片段的迁移率也是不同的。若要有效地分离不同大小的DNA,应采用适当浓度的琼脂糖凝胶(表3-1)。

表3-1 琼脂糖凝胶浓度与可分辨的线性DNA片断大小之间的关系

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续 表

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(3)DNA分子的形态 在同一浓度的琼脂糖凝胶中,超螺旋DNA分子迁移率比线性DNA分子快,线性DNA分子比开环DNA分子快。

(4)电流强度 每厘米凝胶电压不超过5V,若电压过高分辨率会降低,只有在低电压时,线性DNA分子的电泳迁移率与所用电压成正比。

本实验中用GoldViewTM新型核酸染料代替溴化乙锭(EB),采用琼脂糖电泳检测DNA时,GoldViewTM与核酸结合后能产生很强的荧光信号,其灵敏度与EB相当,使用方法与之完全相同。在紫外透射光下双链DNA呈现绿色荧光,而单链DNA呈红色荧光。GoldViewTM不仅能染DNA,也可用于RNA染色。

三、器材和试剂

电子天平、电泳仪、水平电泳槽、制胶槽、加样梳、凝胶成像仪、移液器吸嘴、微量移液器、锥形瓶、微波炉。

琼脂糖(Spanish,鼎国公司)、1×TAE电泳缓冲液、GoldViewTM核酸染料(赛百盛公司)、6×DNA上样缓冲液、DL2000DNA Marker、PCR产物。

四、操作步骤

1.制胶

(1)用电子天平称取1g琼脂糖倒入锥形瓶中,加入100mL 1×TAE电泳缓冲液,即配制成浓度为1%的琼脂糖,稍微摇动后放入微波炉中用中火加热。

(2)1min后停止微波炉,戴手套抓住瓶子,摇转瓶子及其内容物,混合均匀后加热得更快更平稳。

(3)把瓶子放回微波炉中再加热,待液体沸腾后停止,摇匀。

(4)用耐热手套取出锥形瓶,观察琼脂糖是否完全熔化,若未完全熔化,重新放回微波炉中加热直至琼脂糖完全熔解为止。

(5)待琼脂糖冷却至60℃左右(不烫手)时,加入5μL GoldViewTM核酸染料(5μL/100mL TAE缓冲液),混匀,倒入插好加样梳的制胶槽中。

(6)水平放置,等待琼脂糖凝固。

2.上样

(1)竖直向上取出加样梳,注意不要破坏加样孔。将琼脂糖凝胶放入盛有1×TAE电泳缓冲液的水平电泳槽,加样孔一侧靠近电泳槽负极,电泳缓冲液没过凝胶1~2mm为宜。

(2)样品制备:取5μL PCR产物,加1μL 6×DNA上样缓冲液,混匀后加入点样孔,每个泳道加入一个样品,最后加入5μL DL2000DNA Marker。

3.电泳

盖好盖子,打开电泳仪电源,调至稳压,将电压设置为120V,开始电泳。通常等到溴酚蓝染料前沿到达凝胶的底部3/4处时停止电泳。

4.观察、记录并分析结果

(1)取出凝胶,尽量把缓冲液空干,放入凝胶成像仪观察。打开软件,先在0.5×窗口下用白光调节凝胶至合适的位置,然后调节至1×窗口,调节好焦距至清晰后,关闭白光,打开紫外光,调节亮度,点击拍摄按钮,将凝胶照片拍摄下来,关闭紫外灯,点击保存按钮,将图像存到电脑里。

(2)根据DNA Marker每条DNA条带的相对分子质量,对照并估算分析PCR产物的相对分子质量大小。

五、注意事项

1.琼脂糖凝胶浓度根据所要分离DNA片段的大小而定。

2.凝胶的厚度和加样梳的类型根据电泳需要而选择。

3.本实验中用GoldViewTM替代EB(溴化乙锭)染料。虽然未发现GoldViewTM有致癌作用,但对皮肤、眼睛会有一定的刺激,操作时应戴上手套,并且尽量减少污染

4.加入GoldViewTM的琼脂糖凝胶反复熔化可能会对核酸检测的灵敏度产生一定影响,但不明显。

六、实验结果与分析

1.PCR电泳图片(参考图3-2)

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图3-2 PCR产物电泳图

2.GFP相对分子质量估算

七、参考文献

[1] 〔美〕奥斯伯,等.精编分子生物学实验指南.4版.马学军,等译校.北京:科学出版社,2005.

[2] 〔美〕J.萨姆布鲁克,等.分子克隆实验指南.3版.黄培堂,等译.北京:科学出版社,2008.

[3] 吴乃虎,等.基因工程原理.2版.北京:科学出版社,1998.

[4] 彭秀玲,等.基因工程实验技术.2版.长沙:湖南科学技术出版社,1997.

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