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细菌-乳酸发酵方式及培养基的优化

时间:2022-10-11 百科知识 版权反馈
【摘要】:提高L-乳酸产量、纯度及转化率,降低生产成本,是乳酸迅速发展的基本前提。而要提高产量,降低成本,就需要对生产菌种的发酵培养方式及发酵培养基进行优化,为后续的工业化生产提供一定的理论依据。通过对乳酸发酵培养方式及培养基优化得出:先摇床培养24h后转入静置培养,初糖浓度为120~140 g/L时适合TL-2菌的发酵。

细菌L-乳酸发酵方式及培养基的优化

晋明芬 高年发

(天津市工业微生物重点实验室天津科技大学生物工程学院 天津 300222)

摘要:利用细菌进行L-乳酸的发酵,该细菌为兼性厌氧菌,通过几种发酵方式的比较,得出适合该菌种的发酵方式为先摇床振荡培养24h后再转入静置培养;同时对玉米糖化液的初糖浓度进行比较,确定初糖浓度应控制在120~140 g/L;利用响应面法,通过中心组合实验及响应面分析优化了发酵培养基中的3个因素,即蛋白胨豆粕水解液和玉米浆的量,建立了影响因素与响应值L-乳酸产量之间的函数关系,得到一个回归方程,根据回归方程寻优得出,豆粕水解液为34.07 g/L,蛋白胨为24.40g/L,玉米浆为10 g/L。在此培养方式及培养基的基础上进行摇瓶发酵,乳酸产量为117.03g/L,转化率为97.53%,纯度为97.94047%,而且转化率比优化前的78.95%提高了18.58%。

关键词:细菌TL-2; L-乳酸;发酵方式;响应面分析法

乳酸是一种常见的结构简单的羟基羧酸,广泛存在于人体、动物体、植物和微生物中,乳酸按其旋光性可分为D (-) -乳酸,L (+) -乳酸和DL-乳酸三种[1]。人体只能代谢利用其中的L-乳酸,因此,世界卫生组织提倡使用L-乳酸作为食品添加剂和内服药,取代目前普遍使用的DL-乳酸。此外,L-乳酸、L-乳酸盐及其聚合物还广泛应用于医药、农业和化学工业。尤其近几年,人们利用L-乳酸聚合生成的聚L-乳酸(PLA)制造生物降解塑料、绿色包装材料及家用薄膜,用以解决日益严重的环境污染问题,引起了世界的广泛关注,应用前景非常广阔[2]。乳酸的发展潜力巨大,被称为化工产品中沉睡的巨人[3]

提高L-乳酸产量、纯度及转化率,降低生产成本,是乳酸迅速发展的基本前提。而要提高产量,降低成本,就需要对生产菌种的发酵培养方式及发酵培养基进行优化,为后续的工业化生产提供一定的理论依据。

1 材料与方法

1.1 菌种

细菌TL-2(Lactobacillus casei,乳酸乳杆菌干酪亚种) ,由本研究室保藏。

1.2 培养基(g/L)

种子培养基葡萄糖40 (玉米糖化液) ,小肽(由黑龙江乐能生物公司提供) 30,玉米浆5,豆粕水解液10,KH2PO41,(NH42SO45,碳酸钙50,pH 6.0~6.5。灭菌条件: 115℃,15min。

发酵培养基葡萄糖120~140 (玉米糖化液) ,豆粕水解液30,蛋白胨20,玉米浆10,碳酸钙量为糖量的45%,pH 6.0~6.5。灭菌条件: 115℃,15min。

1.3 分析方法

乳酸和葡萄糖的测定:采用生物传感分析仪(SBA-40C ,山东省科学院生物研究所研制)测量。

菌体浓度的测定:比浊法(A600) 。

L-乳酸的纯度的测定:高效液相色谱法测定发酵液中的乳酸总量,用SBA-40C生物传感分析仪测L-乳酸含量,两者之比即得发酵液中L-乳酸的纯度。

2 结果与讨论

2.1 静置发酵和摇床发酵的比较

从图1可以看出,同样培养基,同样接种量的条件下,摇床发酵比静置发酵产酸快,产量高且残糖少,发酵周期短。这说明在发酵时增加一定的溶氧能够促进乳酸菌TL-2的生长并使之多产乳酸。

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图1 摇床和静置发酵时产酸和耗糖曲线

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图2 不同摇床培养时间乳酸发酵的比较

兼性厌氧发酵要经过有氧呼吸和厌氧发酵这两个代谢过程,因而它介于这两者之间[8]。根据同型乳酸发酵机理,乳酸菌在在厌氧条件下利用葡萄糖经过EMP途径生成丙酮酸,丙酮酸在乳酸脱氢酶作用下接受氢被还原成乳酸。EMP途径必须是厌氧条件,但是丙酮酸存在时,即使有氧存在,大量乳酸也可积累[7]

2.2 摇床培养时间对于乳酸发酵的影响[4]

从图2可以看出,摇床培养24h、28h、32h、36h后再静置培养,葡萄糖都可以消耗完全,而且产酸与转化率都差不多,从工业角度,应选用摇床培养24h后再转为静置培养,可减少动力消耗,节省成本,提高乳酸产量。

2.3 先摇床再静置培养乳酸发酵过程中的降糖、产酸及菌体生长曲线

图3为摇床培养24h后再转入静置培养的乳酸整个发酵过程中的糖、酸及菌体生长变化的趋势图。从图中可以看出菌体16h后进入稳定期,葡萄糖含量16h后也迅速下降,进入快速产酸阶段。本条件基本符合乳酸菌的发酵机理,能够实现高产酸,并实现较高的转化率,相对的缩短了发酵周期,减少了能量损耗,降低了生产成本。

2.4 初糖浓度对于乳酸发酵的影响[9,10]

从图4可以看出,随着初糖浓度的增加,乳酸产量提高了,但是转化率却并非如此,所以发酵时,初糖浓度应控制在120~140 g/L。

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图3 乳酸发酵降糖、产酸及菌体生长曲线

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图4 不同初糖浓度乳酸发酵的比较

2.5 响应面分析法优化发酵培养基[4,5,6]

在上述条件下,利用SAS8.01软件对发酵培养基中的三种成分进行优化。通过二次回归的旋转中心结合设计[11,12],对这3个因素进行寻优,以乳酸的产量为响应值,对应于因变量Y。各自变量水平见表1,实验设计及结果见表2。

表1 发酵培养基因素水平编码

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表2 实验方案与结果

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X1= (x1-20) /10; X2= (x2-10) /5; X3= (x3-30) /10;

通过SAS 8.01软件对表2实验数据进行二次多项回归拟合,获得乳酸浓度对蛋白胨、玉米浆和豆粕水解液的二次多项式回归方程为:

Y=115.8414+0.24131X1+0.85704X2+2.93724X3-2.55687X12-1.5625X1X2-0.3125X1X3

-2.55687X22-0.315X2X3-3.44076X32

式中Y为乳酸浓度的预测值,X1、X2、X3分别为蛋白胨、玉米浆和豆粕水解液的编码值。该二次回归方程的方差分析结果见表3。

表3 二次回归方程的方差分析表

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由该方程的方差分析可见,该模型极显著(F=13.8803 > F0.01(9,10) =4.94) ,而且经分析计算,该模型的确定系数R2=92.59% ,表明模型与实际情况拟合很好,能解释92.59%乳酸浓度的变化,因此该模型可用于分析和预测发酵过程中乳酸的产量。

图5至图7为响应面分析的立体图,从图中可直观地看出,各因子对响应值的影响变化趋势。而且回归模型确实存在最大值,求解方程3组成的方程组,可得模型极值点坐标(X1,X2,X3)的代码值为(0.4402 ,0.0020 ,0.4068) ,对应的实际值为:蛋白胨(X1) =24.40;玉米浆(X2) = 10.00;豆粕水解液(X3) = 34.07。此时,模型预测的最大估计值为116.98g/L。为了检验模型预测的准确性,在最佳发酵条件进行发酵实验,所得实际乳酸产量为117.03g/L,可见该模型能较好地预测实际发酵情况。

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图5 响应面

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图6 响应面

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图7 响应面

3 结论

通过对乳酸发酵培养方式及培养基优化得出:先摇床培养24h后转入静置培养,初糖浓度为120~140 g/L时适合TL-2菌的发酵。并在初糖浓度为120g/L时,响应面分析法得到最优的发酵培养基为:豆粕水解液为34.07 g/L,蛋白胨为24.40g/L,玉米浆为10 g/L。在此培养方式及培养基的基础上进行摇瓶发酵,乳酸产量为117.03g/L,转化率为97.53%,液相测得纯度为97.94047%,,而且转化率比优化前的78.95%提高了18.58%。

参考文献

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