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糖化酶的分离提取及性质分析

时间:2022-10-22 百科知识 版权反馈
【摘要】:成品糖化酶可分为液体酶和固体酶两种。精制浓缩液体糖化酶的生产过程中,絮凝工艺是最关键的一步。超滤法适用于生物大分子发酵产品等的提取纯化和浓缩。糖化酶相对分子质量:糖化酶是一种组合酶,采用离子交换层析法分离纯化其各种成分,收集后,经电泳得到其相对分子质量。最适pH:将适量经层析纯化的酶制剂溶于不同pH的缓冲液中,在最适温度下分别测定糖化酶活力,以最高酶活力为100%,绘出不同pH与酶活力的相关曲线。

任务3 糖化酶的分离提取及性质分析

一、糖化酶的分离提取

成品糖化酶可分为液体酶和固体酶两种。固体酶的制备方法可分为盐析法、有机溶剂沉淀法和吸附法等,采用一条合理的提取工艺,可制备系列酶产品以满足不同行业的需求及降低成品的成本,具体流程如图6-13所示。

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图6-13 糖化酶固体酶提取制备工艺流程

目前国内对液体酶产品采用的浓缩方法有两种,一种为依靠热源来蒸发产品中的水分,另一种为利用渗透膜超滤除去产品中的水分。比较上述两种方法,前者设备投资大、耗能多;而后者投资少、耗能低,且操作简单、清洗方便、维修及更换成本低,产品收率高。渗透膜超滤浓缩方法中,絮凝工艺是提取工艺中最关键的一步,直接决定板框过滤等工序的工作与产品的质量。渗透膜超滤浓缩法流程如图6-14所示。

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图6-14 渗透膜超滤浓缩制备液体糖化酶工艺流程

根据上述过程可知,糖化酶的分离提取主要有以下几个步骤。

1.酶液的获得与预处理

固态培养:取孢子布满麸曲、酶活力已达高峰的固态基质,用0.9%的生理盐水搅拌浸泡1h,4层纱布过滤,滤液于4℃,6000r/min,离心10min,上清液即为粗酶液。

液态培养:直接取发酵液于4℃下离心、洗涤,上清液经纱布过滤,合并后得到粗酶液。

预处理:由于发酵所采用的培养基大多含有麸皮等纤维成分,经初步分离所得的粗酶液中大多含有大量不溶性杂质,因此还需要经过絮凝和压滤的处理,从而大大改善发酵液的过滤性,提高澄清度。应用作为糖化酶絮凝剂的种类主要有APAM(阴离子聚丙烯酰胺)、苯甲酸钠、硅藻土、硫酸锌、黄血盐等,具体加入种类和浓度须经实验确定。精制浓缩液体糖化酶的生产过程中,絮凝工艺是最关键的一步。如果絮凝效果不好,将导致处理时间长,增加染菌的可能性。

2.酶液的浓缩

经过预处理的粗酶液一般糖化酶的浓度较低,不适合工业化需要,需要进一步地浓缩。其方法可采用真空浓缩、酒精沉淀、超滤等。前两种方法多用于固体酶制剂的制备,超滤多用于液体制剂的制备。

超滤是加压膜过滤方法的一种,其工作原理是在一定压力下把大溶质分子阻留在膜的一侧(留在原来的溶液中),而小溶质分子透过至膜的另一侧,从而达到分离纯化、浓缩产物的目的。超滤法适用于生物大分子发酵产品(如糖化酶、α-淀粉酶)等的提取纯化和浓缩。该工艺具有成本低、操作方便、条件温和、较好地保持酶活力、产品回收率高等优点。

该方法的使用过程中,需要根据产品质量和工艺要求选择超滤膜、进料口压力、出料口压力、进出料口之压差、操作温度(不超过40℃)、浓缩倍数等条件,以达到最佳的效果。运行过程中定时测定超滤液的流量及酶活力,以确认超滤器运行是否正常。

同时,李静等(2010)用双水相体系[PEG/KH2PO4、PEG/(NH42SO4和PEG/MgSO4]萃取糖化酶,其中以PEG/(NH4)2SO4双水相体系在PEG相对分子质量为20000、PEG溶液浓度为28%、(NH42SO4溶液浓度为20%时,分配系数为0.15,萃取效果最好,即糖化酶回收率最高(96.1%)。

3.酶液的干燥与后处理

如果制作固体酶制剂,将获得的浓缩液沉淀、离心后,所得酶泥放入干燥箱中40℃热风干燥,干燥物磨粉后加入防腐剂、稳定剂(如苯甲酸钠、山梨醇、醋酸钙等)即得到粗酶制剂成品。

而液体酶制剂,只需在浓缩液中加入防腐剂、稳定剂即可。

二、糖化酶的性质分析

1.糖化酶活力测定

具体参考本书相关内容。

2.糖化酶性质

糖化酶相对分子质量:糖化酶是一种组合酶,采用离子交换层析法分离纯化其各种成分(测定有活性的),收集后,经电泳得到其相对分子质量。

最适反应温度:将适量经层析纯化的酶制剂溶于一定pH的缓冲液中,在不同温度下分别测定糖化酶活力,以最高酶活力为100%,绘出反应温度与酶活力的相关曲线。

热稳定性:将适量经层析纯化的酶制剂溶于一定pH的缓冲液中,在不同温度下分别保温不同时间后,测定糖化酶活力,以不经保温的酶活力为100%,绘出保温时间与酶活力的相关曲线。

最适pH:将适量经层析纯化的酶制剂溶于不同pH的缓冲液中,在最适温度下分别测定糖化酶活力,以最高酶活力为100%,绘出不同pH与酶活力的相关曲线。

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