ε-聚赖氨酸高产菌的筛选
曹伟锋 赵 颖 袁国栋 谭之磊 贾士儒(1)
(天津市工业微生物重点实验室天津科技大学生物工程学院 天津 300222)
摘要:依据传统诱变理论和白色链霉菌生物合成ε-聚赖氨酸的特点,确立了以面包酵母菌为敏感菌,抑菌圈为基准的筛选方法。在优化诱变条件的基础上,以白色链霉菌UV38为出发菌株,经紫外线与硫酸二乙酯复合诱、N+离子注入诱变选育出一株遗传性状稳定酸菌株DUL10,比出发菌株抑菌性能提高33.5%。
关键词: ε-聚赖氨酸;白色链霉菌;诱变育种
有机食品是世界食品工业发展的趋势,食品防腐剂的天然化成为这一趋势的必然要求。目前ε-聚赖氨酸是最具优良性能和巨大商业价值的生物防腐剂之一[1]。它是含有25~30个赖氨酸残基的阳离子聚合多肽,当聚合度低于10肽,会丧失抑菌活性[2]。 ε-聚赖氨酸抑菌谱广,在酸性和微酸性环境中对革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌、酵母菌、霉菌均有抑制作用,而且对耐热性芽孢杆菌和一些病毒也有抑制作用[3]。同时,其热稳定性高,水溶性好,食用安全,因此,广泛用于食品保鲜[4]。此外,在基因治疗[5]、微囊药物的制备[6]、高分子材料等领域中,ε-聚赖氨酸亦有着广泛的用途。文中以筛选获得的白色链霉菌UV38为出发菌株,通过紫外线与硫酸二乙酯复合诱变,N+离子注入诱变处理,对ε-聚赖氨酸高产菌株进行了筛选。
1 材料和方法
1.1 出发菌株
白色链霉菌(Streptomyces albulus) UV38天津科技大学生化工程研究室保藏。
(页下注)通讯作者:贾士儒Tel: 022-60601606 E: mail: jiashiru@tust.edu.cn
1.2 培养基
1.2.1 贝纳特斜面培养基(%)[7]
1.2.2 YEPD培养基(%)[10]
1.3 试剂
1.4 诱变育种
1.4.1 硫酸二乙酯(DES)诱变[10]
1.4.2 紫外线(UV)诱变[10]
1.4.3 DES+ UV复合诱变[10]
1.4.4 N+离子注入诱变[12]
1.4.4.1 N+离子注入前样品的处理[13]
1.4.4.2 离子注入
采用N+离子,能量30KeV,剂量1.0×1014,5.0×1014,8.0×1014,1.0×1015,3.0×1015,5.0×1015,8.0×1015,1.0×1016N+/cm2。
1.4.4.3 离子注入处理
离子注入机是由郑州大学提供,在注入机上,用不同的剂量对白色链霉菌的孢子进行注入;注入靶室的真空密度为5×10-2Pa。
1.5 筛选方法
1.5.1 初筛方法
采用管碟法测定100μl发酵液的抑菌圈直径[7]。
1.5.2 复筛方法将初筛得到的菌株转接于摇瓶发酵培养适当时间,采用管碟法测定100μl发酵液的抑菌圈直径。
1.5.3 筛选标准的建立规定对离子注入后的菌株进行筛选时,突变株抑菌圈直径大于对照5%的突变株称为正突变,而小于5%的菌株称为负突变,在±5%之间作为未突变。
1.6 分析方法
见参考文献14。
2 结果与讨论
2.1 敏感菌的确定
根据白色链霉菌代谢产物ε-聚赖氨酸的抑菌特性,采用管碟法,测定100μl发酵液的抑菌性能,选用酵母菌、大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、青霉、枯草芽孢杆菌、米根霉做敏感性对比试验,结果表明(见表1) ,金黄色葡萄球菌为敏感菌时其抑菌圈最大为28.2mm,但其为致病菌,而酵母菌为非致病性菌,且在食品业广泛应用,以其为供试菌株时所形成的抑菌圈也较为清晰可辨,如图1,所以实验中选择酵母菌为敏感菌。
表1 敏感菌的确定
2.2 白色链霉菌诱变筛选
2.2.1 紫外线(UV)诱变处理
通过UV照射30 S、60 S、90 S、120 S的孢子悬浮液,孢子存活率分别为63.6%、7.5%、3.7%和0.0% (见图2) ,根据遗传育种的经验,正向突变较多地出现在偏低剂量中,因此依照白色链霉菌存活率曲线图,确定45 S为最适剂量。
图2 Streptomyces albulus紫外线诱变存活率
2.2.2 硫酸二乙酯处理时间和用量确定
图3和图4表明,以UV38为出发菌株,当用诱变处理时间为25min,细胞的存活率为4.08%;突变率最大为60.98%。当DES体积浓度为1.0%时,菌体存活率为17.6%,突变率为45.27%。说明存活率较低时,正向突变率较大。同时也可以看出,随着诱变剂量的增加,突变率反而下降。上述现象说明DES对白色¥链霉菌的诱变有最适剂量。因此确定DES的最适剂量为:诱变时间25min,DES浓度为1.0% (体积) 。
图3 DES最佳诱变时间的确定
Fig3 The determination of optimum
treating period with DES
存活率 突变率
图4 DES诱变最佳浓度的确定
Fig4 The determination of optimum
treating concentration with DES
存活率 突变率
2.2.3 复合诱变方法的确立
2.2.1和2.2.2单从硫酸二乙酯和紫外线单独作用的角度得出的结论,但其二者复合作用将对细胞致死率和突变率造成一定的影响,另外还存在着硫酸二乙酯和紫外线处理次序的问题,因此主要运用DES+UV复合诱变的方法筛选高产菌株。出发菌株UV38遗传性状稳定,DES通过烷化基团使DNA分子上的碱基及磷酸部分被烷化,碱基中容易发生烷化作用的是嘌呤类。[8]但烷化剂不能和胸腺嘧啶反应,腺嘌呤的烷化作用也较少发生(仅占烷化反应的5%~10%)[9]。
紫外线(UV)的诱变频率高,而且不易回复突变[8],主要导致形成嘧啶二聚体[9],因此选择的复合诱变方案为先DES后UV处理。
吸取单孢子悬液4 ml,加入16ml pH7.0磷酸缓冲液,混匀后加入0.2 ml DES (1%) ,30℃恒温振荡一定时间,加入10ml 25% Na2S2O3终止反应。然后吸取DES诱变后的悬液10 ml于φ9 cm无菌平皿中,打开皿盖,在磁力搅拌状态下用紫外灯(波长253.6nm,功率15w,照射距离30cm)照射一定时间。组合为: a、紫外45s + DES 15min; b、紫外20s + DES 25min; c、紫外20s + DES 25min。
2.2.4 注入离子的选择
目前,用于微生物离子注入诱变的离子主要为H+,Ar+,N+,三者在其他条件不变的情况下,在致死率关系上还存在着一些争议,但普遍认为N+的诱变效率最高,因为N+为组成DNA碱基的重要元素之一,N+注入不仅可以直接引起前碱基分子结构的变化,还可以参与细胞的重组和修复,产生的诱变突变较多,因此常用于微生物和植物诱变育种[11],所以这里选择N+对DES+UV诱变所得菌株进行处理。
2.2.5 诱变筛选结果
2.3.5.1 DES+UV复合诱变的结果
经初筛与复筛后获得5株菌的抑菌圈直径比UV38大的比较明显,如表2所示。其中DU82遗传性状稳定,菌株的电镜图如图5所示,菌丝比较粗壮,孢子椭圆形。DU82与UV38的抑菌圈见图6。
表2 DES+UV复合诱变突变株的筛选结果
图5 DU82的电镜照片
图6 DU82 (右)与UV38 (左)的抑菌圈图片
由表2可看出DES+UV诱变后正向突变菌株的抑菌圈直径最大为17.7mm。为进一步提高菌株的产量,选择DU82为N+离子注入诱变的出发菌株。
2.3.5.2 N+离子注入诱变结果
2.3.5.2.1 用30keV能量不同剂量注入白色链霉菌孢子对它存活率和突变率进行了考察。存活率曲线见图7。
图7 在30keV能量下不同剂量下的存活率
由图7可以看出白色链霉菌在30keV能量下的存活率在陡降后又有一回升,之后形成两个峰。陡降的原因可能为无菌平皿放入注入靶室并密封后,立即抽真空,进行离子注入时间仅10秒左右,之后又将靶室升压与大气压相等取出平皿,此过程经历压力变化较为剧烈,应为细胞致死的主要原因。之后的存活率上升应为压力变化的幅度影响减少,离子注入剂量起主导作用,随剂量的增加,致死率上升。在8×1015ion/cm2致死率的减少可能为细胞在此时产生了应激反应,具体原因还不大清楚,但如不计初始的陡降点,在该位点的变化与其他文献[13]所述马鞍型曲线相似。
2.3.5.2.2 经初筛与复筛后获得5株菌的抑菌圈直径比DU82大的比较明显,如表3所示。其中DUL10经数代继传均遗传性状稳定,比出发菌株UV38抑菌性能提高了33.5%。菌株的电镜图如图8所示,菌丝较DU82较细,孢子椭圆形。DU82与DUL10的抑菌圈见图9。
图8 DUL10电镜照片
图9 DU82 (1)DUL80 (2) DUL32 (3)与DUL10 (4)的抑菌圈图片
表3 N+离子注入诱变突变株的筛选结果
参考文献:
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[13]甄卫军,李茜,等.低能N+离子注入谷氨酸产生菌诱变选育及其发酵的研究.中国科学院研究生院学报,2000,19 (4)
[14]姜俊云,贾士儒,等.搅拌转速和pH对ε-聚赖氨酸发酵的影响.生物加工过程,2004,2 (2)
【注释】
(1)基金项目:国家“十五”科技攻关项目(编号: 2004BA713B05-06)
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