(一)目的原理
利用特殊核酸荧光染料[碘化吡啶(pyridinium,PI)、4′6-二氨基-2-苯基吲哚(4′6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)等]标记DNA,通过流式细胞仪检测荧光染料的激发荧光。荧光强度与DNA的含量成量效关系,即DNA含量多少与PI结合量成正比。因此,FCM分析细胞周期时,将DNA含量直方图分为三部分,即G0/G1、S、G2/M期。
(二)试剂与仪器
1.PBS、PI50μg/ml,50μg/mlRNA酶。
2.70%乙醇。
3.400目筛网。
4.流式细胞仪 FC500。
(三)实验流程
1.细胞培养至70%~80%融合时,PBS洗2次,0.25%胰酶消化,收集离心管中。
2.取(1~5)×106个细胞,75%乙醇4℃固定过夜(可于4℃存放1周备用)。
3.测定前离心除去75%乙醇,用PBS洗2次,重悬于0.5mlPBS中。
4.应用Becton-Dickinson流式细胞仪(激发光波长488nm,发射光波长570nm)检测自发荧光。
5.然后样品经50μg/mlRNA酶处理后,用PI50μg/ml于暗处染色30min后上机。
6.应用流式细胞分析仪测量DNA含量,以FS的平均强度来反映细胞的大小。
7.细胞周期变化数据用CellFIT Cell Cycle Analysis Version 2.01.2软件分析;以细胞周期各时相细胞百分率记录数据并分析;细胞增殖指数PI=(S+G2/M)/(G0/G1+S+G2/M)×100%。
(四)注意事项
1.细胞状态要良好,必须计数细胞,染色要充分。
2.细胞染色后及时上机分析,使用PI十分容易粘连细胞,造成管路阻塞。
3.应用分析软件时,如果细胞状态好,图形成正态分布,分析准确率较高;反之,要根据实际情况图形设定门、标尺,尽量减少分析数据造成的误差。
(五)典型图例
见图1-21。
图1-21 不同处理条件下的大鼠系膜细胞的周期表达
FBS.胎牛血清;MZR.咪唑立宾
(六)常见问题及处理方案
1.为什么我做出来的图形不漂亮?峰比较宽?
答:样本处理很重要,CV值最好能够在5左右。如果死亡细胞和细胞碎片比较多,就很容易造成CV值偏大。峰宽加大。
2.为什么上机检测时,发现没有什么细胞呢?
答:可能在清洗过程中,由于转速不够,或者倾倒液体将大量细胞丢失。或者由于过滤不当造成细胞丢失。注意选取底部为尖头的离心管。可用吸管吸走清洗的液体而不是倾倒。
3.为什么每次做的细胞周期数值相差很多,对照组都不一样?
答:细胞周期的检测,每次机器的条件一致的前提下,样本处理的时间也要相同。对于二倍体细胞而言,不同时间检测的细胞各个期的数值时不同的。
4.为什么我的细胞检测总是停滞在G1期?
答:最可能的原因是细胞生长过密,应该尽量把检测细胞的密度调整在50%~80%,生长过密,细胞停滞在G1期。
5.细胞状态不好或者细胞粘在一起,影响周期检测吗?
答:无论是培养过程中,还是样本处理过程中,如果细胞状态不好,很容易造成细胞死亡。细胞粘连在一起,没有形成单细胞悬液,直接的后果就是周期检测中CV值偏大,结果分析很不准确。
6.为什么我的图形中出现双峰?
答:很有可能是细胞染色不充分。细胞管壁的细胞没有吹下来,造成仅有一部分细胞被染色,其他细胞没有被染色或染色不充分。
总结:良好的细胞状态,合理的细胞密度,单细胞悬液,染色充分,分析合理是保证流式细胞周期检测成功的重要条件。
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