机能学实验中，无论是急性动物实验，还是慢性动物实验，都需要对实验动物进行处理，用药物对实验动物进行处理是一种常规方法。对实验动物进行药物处理涉及给药方法。本节主要介绍在生理科学实验中常用的给药方法。
较常见的给药方法有：摄取法给药、注射法给药、涂布法给药和吸入法给药，其中前两种方法较为常用。
在急性实验中所进行的各种注射，一般都不需要无菌操作。做慢性动物实验时，应根据给药途径选择无菌操作。
（一）经消化道给药法
1.自动摄取法 把药物放入饲料或溶于动物饮水中让动物自动摄取。此法简单方便，但摄入的剂量不够准确。该方法一般适用于对动物疾病的防治或某些药物的毒性实验，复制某些与食物有关的人类疾病动物模型。
2.喂药法 如药物为固体，对体形较大的动物如豚鼠、兔、猫和狗，可用喂药法给药。动物抓取固定好，操作者的左手拇、示指压迫动物颌关节处或其口角处，使口张开，用镊子夹住药物，放进动物舌根部，然后闭合其嘴，使动物吞咽下药物。
3.灌胃给药法 灌胃给药能准确掌握给药量、给药时间、发现和记录药效出现时间及过程。但灌胃操作会对动物造成损伤和心理影响。熟练的灌胃技术可减轻对动物的损伤。
图3-13 小鼠灌胃法
小动物灌胃用灌胃器，灌胃器由注射器和灌胃管构成，用尖端磨平后稍加弯曲的注射器针头制成灌胃管。小鼠的灌胃管长4～5cm，直径约1mm（10～12号针头），大鼠的灌胃针长6～ 8cm，直径约1.2mm（12～14号针头）。胃管插入深度大致是从口腔至最后一根肋骨后缘，成年动物插管深度一般是：小鼠3cm、大鼠5cm、家兔15cm、犬20cm。小鼠灌胃法见图3-13。
4.经直肠给药 根据动物大小选择不同的导尿管，在导尿管的头部涂上凡士林，使动物取蹲位，一操作者以左臂及左腋轻轻按住动物的头部及前肢，用左手拉住动物尾巴以暴露肛门，右手轻握后肢。另一操作者将导尿管缓慢送入肛门，插管深度以7～9cm为宜。药物灌入后，取生理盐水将导尿管内的药物全部冲入直肠内，然后将导尿管在肛门内保留一会儿再拔出。
（二）注射给药法
1.皮下注射法 在准备注射部位的皮肤后，左手将
注射部位附近的皮肤提起，右手握住注射器，斜向刺入。
刺入后左手放开皮肤，先用左手将活塞回抽，若无血液流入注射器则表明并未刺伤血管，则可将注射器活塞徐徐推进，将预定剂量的药物注入。若注射针头已刺伤血管，则应将针头拔出，重新注射。小鼠皮下注射一次量为0.1～0.3ml／10g体重，大鼠一次注射量约为1ml／100g体重。
2.腹腔注射法 动物腹部向上固定，腹腔穿刺部位一般多在腹白线偏左或偏右的下腹部。小鼠腹腔注射时，左手固定动物，使鼠腹部面向捉持者，鼠头略朝下。右手持注射器进行穿刺，注射针与皮肤面呈45°角刺入腹肌（图3-14），针头刺入皮肤后进针3mm左右，当感到落空感时表示已进入腹腔，回抽无肠液、尿液后即可注射。注射量0.1～0.2ml／10g体重。应注意切勿使针头向上注射，以防针头刺伤内脏。大鼠、豚鼠、兔、猫等皆可参照小鼠腹腔注射法。但应注意家兔与猫在腹白线两侧注射，离腹白线约1cm处进针。大鼠1～3ml／100g体重。
3.肌内注射法 肌内注射主要用于注射不溶于水而悬于油或其他剂型中的药物。肌内注射应选择肌肉发达、血管丰富的部位，如大鼠、小鼠和豚鼠的大腿外侧缘。小鼠、大鼠、豚鼠一般不做肌内注射，如需要时，每只小鼠一次注射量不超过0.1ml。
4.静脉注射法 静脉注射应根据动物的种类选择注射的血管。大鼠和小鼠多选用尾静脉，家兔多选用耳缘静脉（图3-15），犬多选用后肢小隐静脉，豚鼠多选用耳缘静脉或后肢小隐静脉注射。因为静脉注射是通过血管给药，所以只限于液体药物。如果是混悬液，可能会因悬浮粒子较大而引起血管栓塞。实验过程中需反复静脉给药，也可不抽出针头，将针头固定，换一有肝素生理盐水的注射器接上，防止血液流失和凝血，以备下次注射时使用。
图3-14 小鼠腹腔注射方法
图3-15 兔耳缘静脉注射法
（三）涂布法给药
涂布皮肤方法给药主要用于鉴定药物经皮肤的吸收作用、局部作用或致敏作用等。药液与皮肤接触的时间可根据药物性质和实验要求而定。
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