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实训蛋白酶的固体发酵

时间:2022-02-12 理论教育 版权反馈
【摘要】:实训29 蛋白酶的固体发酵——孢子数和酶活力 的测定一、实训目的学习用固态米曲霉制蛋白酶的方法。了解不同条件对米曲霉产孢子数和蛋白酶活力的影响。利用蛋白酶催化酪蛋白在三氯乙酸可溶物中紫外线光密度的变化,可测定酶活力的高低。在以上优化条件下制曲,采用不同浓度的氯化钠浸提蛋白酶,考查不同浓度的氯化钠对酶活力的影响。
实训蛋白酶的固体发酵_孢子数和酶活力_微生物实验实训

实训29 蛋白酶的固体发酵——孢子数和酶活力 的测定

一、实训目的

(1)学习用固态米曲霉制蛋白酶的方法。

(2)掌握孢子测定的方法。

(3)掌握蛋白酶活力测定的方法。

(4)了解不同条件对米曲霉产孢子数和蛋白酶活力的影响。

二、实训原理

蛋白酶广泛存在于动物内脏、植物茎叶、果实和微生物中。微生物蛋白酶主要由霉菌、细菌生产,其次是酵母、放线菌。本实训中,采用米曲霉发酵生产蛋白酶。

固态发酵是指在没有或几乎没有自由水存在下,在有一定湿度的水不溶性固态基质中,用一种或多种微生物发酵的一个生物反应过程。

米曲霉发酵能产生蛋白酶、淀粉酶、脂酶等多种酶,其广泛用于酱油、酱类产品的制作,可形成酱油和酱类物质独特的色、香、味、体。将纯种的米曲霉接种在麸皮培养基上,保持适宜的条件,米曲霉以麸皮培养基中的糖和氨基酸为养分生长繁殖,并分泌各种酶。

蛋白酶活力测定原理:蛋白质或多肽水解后生成的含苯环氨基酸对275nm波长的紫外光具有最大的吸收值。利用蛋白酶催化酪蛋白在三氯乙酸可溶物中紫外线光密度的变化,可测定酶活力的高低。

三、实训器材

1.材料

麸皮,面粉,豆饼粉,米曲霉菌种,95%乙醇,稀硫酸(1∶10),2%酪蛋白,4%三氯乙酸,氯化钠等。

2.仪器

固态培养箱,显微镜,血球计数板,分光光度计。

四、实训步骤

麸皮和面粉等按1∶5比例加水混匀后,放入高压蒸汽灭菌锅内121℃蒸煮30min,冷却至40℃后接入米曲霉菌种,在一定温度下培养,观察和记录米曲霉生长的典型现象,在培养48h后测定其孢子数,再培养72h后测定其蛋白酶活力。

1.孢子数的测定方法

1)样品稀释

精确称取种曲1g(称准至0.002g),倒入盛有玻璃珠的250mL锥形瓶内,加入95%乙醇5mL、无菌水20mL、稀硫酸(1∶10)10mL,在旋涡均匀器上充分振摇,使种曲孢子分散,然后用三层纱布过滤,用无菌水反复冲洗,使滤渣不含孢子,最后稀释至500mL。

2)制计数板

取洁净干燥的血球计数板盖上盖玻片,用无菌滴管取孢子稀释液1小滴滴于盖玻片的边缘处(不宜过多),让滴液自行渗入计数室中,注意不可有气泡产生。若有多余液滴,可用吸水纸吸干,静置5min,待孢子沉降。

3)观察计数

用显微镜的低倍镜和高倍镜观察,由于稀释液中的孢子在血球计数板上处于不同的空间位置,要在不同的焦距下才能看到,因此计数时必须逐格调动微调螺旋,才能不留遗漏,如孢子位于格的线上,数上线不数下线,数左线不数右线。

使用16×25型计数板时,只计板上四个角上的4个中格(即100个小格),如果使用25×16规格的计数板时,除计四个角上的4个中格外,还需要计中央一个中格的数目(即80个小格)。每个样品重复观察计数不少于2次,然后取其平均值。

4)计算

(1)16×25型计数板。

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式中:N——100小格内孢子总数(个);

V——孢子稀释液体积(mL);

G——样品质量(g)。

(2)25×16型计数板。

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式中:N——80小格内孢子总数(个);

V——孢子稀释液体积(mL);

G——样品质量(g)。

2.酶活力的测定方法

试管两只,每只试管加入样品稀释液1mL,置于40℃水浴中预热2min,再各加入经同样预热的酪蛋白5mL,精确保温10min,时间到后,各管立即加入0.4mol/L三氯乙酸5mL,以终止反应。继续在水浴中保温20min,使残余蛋白质沉淀后离心分离或过滤。取滤液用分光光度计在275nm处测定其吸光度。

空白实验2测定方法同上,在加酪蛋白之前可先加0.4mol/L三氯乙酸5mL,使酶失活。

计算:在40℃下蛋白酶1min水解酪蛋白产生1μg酪氨酸,定义为一个蛋白酶活力单位。

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式中:K——常数,吸光度为1时蛋白酶活力单位,由酪氨酸标准曲线得出;

N——稀释倍数;

A——吸光度。

五、结果记录

1)各种因素对制曲的影响(主要是孢子数和酶活力的影响)

(1)不同培养基配比对制曲的影响(表3-16)。

表3-16 不同培养基配比对制曲的影响

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(2)不同水分量对制曲的影响(表3-17)。

以上面的结果确定培养基配比,考查不同水分对制曲的影响。

表3-17 不同水分量对制曲的影响

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(3)不同接种量对制曲的影响(表3-18)。

以上面确定的水分和培养基,考查不同接种量对制曲的影响。

表3-18 不同接种量对制曲的影响

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(4)不同pH对制曲的影响(表3-19)。

以上面得到的水分、培养基和接种量,考查不同起始pH对制曲的影响。

表3-19 不同pH对制曲的影响

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(5)不同培养温度对制曲的影响(表3-20)。

以上面得到的数据考查不同温度对制曲的影响。

表3-20 不同培养温度对制曲的影响

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(6)不同培养时间对制曲的影响(表3-21)。

在以上优化的条件下,考查不同培养时间对制曲的影响。

表3-21 不同培养时间对制曲的影响

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续表

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(7)不同氯化钠浓度对蛋白酶活力的影响(表3-22)。

在以上优化条件下制曲,采用不同浓度的氯化钠浸提蛋白酶,考查不同浓度的氯化钠对酶活力的影响。

表3-22 不同浓度氯化钠对蛋白酶活力的影响

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2)结果分析

根据上面的实验结果对影响米曲霉制曲的主要条件进行分析,得出结论。

六、思考题

(1)经过测定计算出的蛋白酶活力大小。

(2)如果麸皮和面粉比例不是1∶5,会有什么样的结果?

(3)发酵液能用几种方法提取?

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