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利用进行氨基酸分析

时间:2022-02-12 理论教育 版权反馈
【摘要】:为取得较高的重现性,建议在nmol级别进样,由于氨基酸相对分子质量在130左右,故通常进样浓度为100~1 000μg/g,对几个μmol/mL的样品可直接进行柱前衍生,太高浓度的样品最好稀释10~100倍再分析。注入氨基酸标准系列溶液各10μL,进行高效液相色谱分析;同时注入试样溶液10μL,进行高效液相色谱分析,以保留时间定性,以峰高或峰面积结合标准曲线定量。

一、目的及要求

1.了解高效液相色谱仪(HPLC)的结构和原理,掌握高效液相色谱的操作要点与外标法。

2.了解植物氨基酸液的制备方法。

3.掌握高效液相色谱仪(HPLC)对氨基酸进行分析的方法。

二、实验原理

高效液相色谱法是继气相色谱之后,于20世纪70年代初期发展起来的一种以液体作流动相的新色谱技术。它适用于分离分析稳定性差、相对分子质量(400以上)大、沸点高的物质及具有生物活性的物质。高效液相色谱法具有高柱效、高选择性、分析速度快、灵敏度高、重复性好、应用范围广等优点。该法已成为现代分析技术的重要手段之一,目前在化学、化工、医药、生化、环保、农业等领域获得广泛的应用。高效液相色谱仪由高压输液系统、进样系统、分离系统、检测系统、记录系统等五大部分组成。

分析前,选择适当的色谱柱和流动相,开泵,冲洗柱子,待柱子达到平衡而且基线平直后,用微量注射器把样品注入进样口,流动相把试样带入色谱柱后,根据被测物质在色谱柱中的分配系数的不同进行分离,分离后的组分依次流入检测器的流通池,最后和洗脱液一起排入流出物收集器。当有样品组分流过流通池时,检测器把组分浓度转变成电信号,经过放大,用记录器记录下来就得到色谱图。色谱图是定性、定量和评价柱效高低的依据。

三、仪器与试剂

1.仪器

Agilent 1200液相色谱,色谱柱(4.6 mm×150 mm),ODS(5μm),紫外可见检测器,定量管(20μL),微量注射器(50μL),精密酸度计,超声波振荡器,研钵,0.45μm滤膜(水系),减压抽滤系统,微量离心过滤管,烧杯,量筒,容量瓶及移液管等

2.试剂

衍生液:异硫氰酸苯∶甲醇∶三乙胺∶水(体积比)=1∶7∶1∶1

正己烷

氨基酸标样

乙腈、乙酸、乙酸钠

以上试剂中乙腈为色谱纯,水为二次蒸馏水,其他为分析纯

四、实验步骤

1.柱前衍生步骤

(1)将200μL衍生液加入200μL氨基酸标样或样品中,振荡使混合均匀,室温放置1 h。

(2)反应液中加入400μL正己烷,充分振荡后放置使分层。

(3)取下层溶液用一次性滤膜过滤器(0.45μL)过滤。

(4)取滤液5μL注入HPLC。

2.分离条件

(1)色谱柱:Shim-pack VP-ODS 4.6 mm×15 cm。

保护柱:Shim-pack GVP-ODS 4.6 mm×1 cm。

(2)流动相

A液:0.1 mol/L乙酸钠pH 6.50(用乙酸调整,500 mL乙酸钠中约加2滴乙酸)。

B液:乙腈/水=4/1(体积比)。

(3)流量:1 mL/min。

(4)柱温:36℃。

(5)检测波长:254 nm。

(6)梯度洗脱程序,见表8-4。

表8-4 梯度洗脱程序

进样量可在pmol级别。为取得较高的重现性,建议在nmol级别进样,由于氨基酸相对分子质量在130左右,故通常进样浓度为100~1 000μg/g,对几个μmol/mL的样品可直接进行柱前衍生,太高浓度的样品最好稀释10~100倍再分析。

3.样品处理

(1)液体样品:如清凉饮料、酒精饮料、咖啡溶液等,酱油、醋需稀释10倍以上。用SEP-PAK C18净化柱处理,收集馏出液,经0.45μL微孔滤膜过后,备用。

(2)固体或半固体样品:如水果、蔬菜、腌制的农产品、蛋黄酱、咖啡等,将样品捣碎、均质后,加入一定量的0.01 mol/L NaOH溶液提取,经离心分离或过滤后收集提取液,用SEP-PAK C18 Cartridge净化柱处理,收集馏收液,经0.45μm微孔滤膜过滤后,备用。

4.测定

注入氨基酸标准系列溶液各10μL,进行高效液相色谱分析;同时注入试样溶液10μL,进行高效液相色谱分析,以保留时间定性,以峰高或峰面积结合标准曲线定量。

五、注意事项

1.为保证试样的代表性,可任取固体样品,研细、混匀、干燥、称量,再从中称取1/10质量进行实验。

2.流动相、试液均应以0.45μm滤膜减压过滤,以免堵塞进样阀、毛细管和色谱柱。

3.按照上述步骤可以确定试液色谱图中每个峰的归属并测定其含量,若配制标准溶液,则可一次测定17种氨基酸的含量。

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