【实验目的】
1．观察若干因素对家兔尿生成的影响。
2．如实记录实验结果，并分析其作用机制。
【实验原理】 尿的生成过程包括肾小球滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌过程。肾小球滤过受滤过膜通透性、血浆胶体渗透压、肾小球血浆流量和肾小球毛细血管压等因素的影响，后两者又受肾交感神经以及肾上腺素、去甲肾上腺素等体液因素的影响，肾小管重吸收受小管液中溶质浓度等因素的影响。此外，影响尿液浓缩和稀释机制的因素，影响血管升压素释放的因素，影响肾素-血管紧张素-醛固酮系统的因素以及循环血容量、全身动脉血压等都能对尿生成发生影响。
【实验用品】 家兔、生物信号采集系统、计算机、哺乳类动物手术器械一套、保护电极、受滴器、压力换能器、输尿管插管或膀胱插管、动脉插管、气管插管、注射器、尿糖试纸、培养皿、滴管、1％戊巴比妥钠（或20％的氨基甲酸乙酯）溶液、0.1％肝素溶液、20％葡萄糖溶液、0.01％去甲肾上腺素溶液、垂体后叶素、呋塞米、生理盐水。
【实验步骤】
1．一般手术的称重，麻醉，仰卧固定（麻醉、固定的方法与前面相同）。
2．颈部手术和血压描记与哺乳动物动脉血压调节实验相同。分离右侧颈迷走神经，穿线备用，有条件时可做一颈外静脉插管，外端连三通开关，以备静脉注射药物用。
3．尿液收集可以采用膀胱插管或输尿管插管的方法。
（1）膀胱插管：在耻骨联合上缘沿正中线向前作2～3cm长的纵行皮肤切口，沿腹白线切开腹腔，注意不要切到充盈的膀胱壁，将膀胱慢慢移出体外（动作轻柔以免刺激强烈引起家兔排尿）。将膀胱向上翻转分离出尿道入口并穿线结扎。再翻转膀胱在其顶部毛细血管稀少的区域做一荷包缝合，在荷包中心做一小切口，插入注满水的膀胱插管，收紧缝合线扎紧。手术完毕，将插管的膀胱送回腹腔，腹部切口缝合，并用温盐水纱布覆盖术区，以保持腹腔内温度，膀胱插管通过橡胶管连接记滴装置。
（2）输尿管插管：在耻骨联合上缘沿正中线向前作4cm长的纵行皮肤切口，沿腹白线切开腹腔，将膀胱慢慢移出体外，在其底部找到膀胱三角，仔细辨认输尿管。将两侧输尿管与周围组织轻轻分离。穿线将双侧输尿管近膀胱端结扎，在结扎点的上方剪一斜切口，切口约为管径的一半，将两根充满生理盐水的细塑料管向肾脏方向分别插入输尿管内，并穿线结扎固定，随后可见尿液从细塑料管内慢慢逐滴流出。手术完毕，将膀胱送回腹腔，腹部切口缝合，并用温盐水纱布覆盖术区，以保持腹腔内温度，细塑料管另一端连至受滴器。
4．连接并开启实验装置
5．观察
（1）观察并记录正常的血压和尿量作对比。
（2）增加循环血量：经耳缘静脉或颈外静脉插管缓慢注射37℃注射用生理盐水20ml，观察血压和尿量变化。
（3）间歇刺激颈迷走神经外周端。剪断右侧颈迷走神经，以中等强度重复脉冲，采取短暂间歇多次的刺激方法，刺激右侧颈迷走神经外周端，使血压下降并维持在50mmHg左右大约2min，观察尿量有何变化。
（4）注射高渗葡萄糖：注射前先取2滴尿液作尿糖定性试验，观察是否阳性。然后由耳缘静脉或颈外静脉插管注射20％葡萄糖溶液5ml，观察血压和尿量变化。在尿量明显增多时，重新取2滴尿液作尿糖定性试验。待尿量恢复至注射葡萄糖前水平时，再取2滴尿液作尿糖定性试验。
（5）注射呋塞米：经耳缘静脉或颈外静脉插管注射呋塞米2mg／ml，观察血压和尿量变化。
（6）注射垂体后叶素：经耳缘静脉或颈外静脉插管注射，观察血压和尿量变化。
（7）注射去甲肾上腺素：经耳缘静脉或颈外静脉插管注射0.01％ 去甲肾上腺素溶液5ml，观察血压和尿量变化。
（8）放血：分离另一侧股动脉插管放血，使血压迅速下降至10.7k Pa（80mmHg）以下，观察血压和尿量变化。
（9）补充生理盐水：放血后，再迅速从耳缘静脉或颈外静脉插管注射温热（约37℃）生理盐水，观察血压和尿量变化。
【注意事项】
1．每项观察前后均须有对照血压和尿量记录。
2．腹部切口不宜过大，并注意保温。
3．手术操作应轻柔，避免损伤性尿闭。不能过度牵拉输尿管，防止输尿管挛缩导致不能导出尿液，必要时可局部敷用2％普鲁卡因。
4．输尿管插管时，注意不要插入其黏膜层，并避免反复插损伤黏膜而造成出血，以致血液凝固而堵塞管道。
5．输尿管插管不能扭曲，以免引流不畅。
6．本实验要作多次静脉注射，应注意保护耳缘静脉，静脉穿刺从耳尖开始，逐步移向耳根部。
7．若采取经颈外静脉插管注射给药的方法，则应在药物注射完毕后，再推入少许生理盐水，以便将留在插管内的药物全部注入动物体内。
8．每进行一次实验，均应等待血压和尿量基本回复到对照值后再进行。
【分析与思考】 静脉注射高渗葡萄糖后，尿量为什么会增多？
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