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膀胱腹膜反折距膀胱有几厘米

时间:2022-03-22 理论教育 版权反馈
【摘要】:影响肾小球滤过的因素有:有效滤过压、滤过膜面积及其通透性和肾血浆流量。滤过膜面积及其通透性在正常情况下保持稳定,但在肾小球肾炎等病理情况下,可因具有滤过功能的肾小球减少致滤过面积减少,因机械屏障和电学屏障作用破坏而致膜通透性增加。将血压换能器固定于铁支柱上,其位置应与心脏在同一平面。

【目的】 观察刺激迷走神经和静脉注射生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素等药物对尿量及尿液成分的影响,分析其作用机制,加深对尿生成过程及其调节机制的理解。

【原理】 尿液生成过程包括肾小球滤过、肾小管与集合管的重吸收和分泌,凡影响上述过程的因素都可引起尿量的改变。影响肾小球滤过的因素有:有效滤过压、滤过膜面积及其通透性和肾血浆流量。有效滤过压是肾小球滤过作用的动力,而有效滤过压的高低主要取决于肾小球毛细血管血压、血浆胶体渗透压和囊内压,其中任一因素发生变化均会影响有效滤过液,进而影响肾小球滤过率。滤过膜面积及其通透性在正常情况下保持稳定,但在肾小球肾炎等病理情况下,可因具有滤过功能的肾小球减少致滤过面积减少,因机械屏障和电学屏障作用破坏而致膜通透性增加。肾血流量的调节机制包括自身调节、神经调节和体液调节,当动脉血压在80~l80mmHg波动时,通过自身调节的作用可保持肾血流量的稳定,而交感神经兴奋、血液中去甲肾上腺素和血管紧张素等分泌增加可引起肾血管收缩,血流量减少。

重吸收和分泌的调节,由神经、体液和自身调节,尤其是体液调节来完成,参与体液调节的激素主要是血管升压素和醛固酮。另外,肾小管的重吸收有一定限度,如血糖浓度过高,超过肾糖阈,将出现糖尿,并由于小管液溶质浓度的增加,使小管液渗透压升高,水的重吸收减少,导致尿量增加,这种现象称为渗透性利尿。

【材料】 家兔;计算机生物信号处理仪,压力换能器,记滴器,兔手术台,哺乳动物手术器械,注射器(20、10、1ml各一副),膀胱插管,试管,试管夹,培养皿,酒精灯,丝线,棉绳,纱布,尿糖试纸;20%氨基甲酸乙酯,生理盐水,20%葡萄糖,1∶10 000去甲肾上腺素,垂体后叶素,呋塞米,0.6%酚红,10%NaOH。

【方法】

1.仪器连接和参数设置

(1)颈动脉血压测量记录装置详见第5章中综合实训项目二“影响家兔动脉血压的因素”。将血压换能器固定于铁支柱上,其位置应与心脏在同一平面。压力换能器输出线接计算机生物信号处理仪输入通道1。

(2)血压记录的参数设置同实验“影响家兔动脉血压的因素”。

①RM6240系统:压力换能器输入通道选择血压记录模式,时间常数为直流,滤波频率100Hz,灵敏度12kPa,采样频率800Hz,扫描速度500ms/div。连续单刺激方式,刺激强度5~10V,刺激波宽2ms,刺激频率30Hz。

②MedLab系统:压力换能器输入通道选择血压记录模式,通道放大倍数200、直流耦合(下限频率DC)、上限频率30Hz,采样间隔2ms;串刺激方式,波宽2ms,刺激强度5~10V,时程1s,频率30Hz。

(3)尿液记录:记滴器导线接至受滴插口。

以RM6240系统为例进行说明。在示波“菜单”中,选择“记滴功能”,弹出对话框(图8-1)。选择“开始记滴”按钮,在“开始时刻”对话框中系统自动记录这一时刻,并在“速率”框中自动显示当前尿滴的速率。此时“开始记滴”按钮变为“停止记滴”,需停止时,点此按钮。系统自动显示记滴时间、滴数和平均速率。记录波形,先“开始记录”,再“开始记滴”。

图8-1 记滴对话框

2.手术准备

(1)麻醉与固定:从兔耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯(4ml/kg体重)。待兔麻醉后,将其仰卧,固定四肢及兔头。

(2)颈部手术:剪去颈前部兔毛,正中切开皮肤(切口长度5~6cm),用止血钳或玻璃分针纵向分离软组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管侧后方的右血管神经鞘,从血管神经鞘中仔细分离出迷走神经,并在神经下穿线备用。分离左侧颈总动脉,行颈动脉插管。静脉注射肝素,剂量为1 000U/kg体重。记录血压。

(3)腹部手术:从耻骨联合向上沿中线行长约4cm的切口,沿腹白线切开直至打开腹腔,将膀胱轻拉至腹壁外,辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部后位,用线结扎膀胱颈以阻断膀胱与尿道的通路(注意:输尿管与膀胱间必须保持通畅)。用止血钳提起膀胱前壁,选择血管较少处,切一纵行小口,插入插管后用线结扎(图8-2)。如膀胱壁较松弛而膀胱容积仍较大时,可用粗线将膀胱扎掉一部分,使膀胱内的贮尿量减至最少。手术完毕后,用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口。

图8-2 膀胱插管

使插管的引流管出口处低于膀胱水平,引出的尿液应滴在记滴器的两个电极上,滴下的尿液用培养皿盛接。

【观察项目】

1.连续记录动脉血压。

2.记录正常尿流量(滴/分)。

3.静脉快速注射37~38℃的生理盐水20ml,观察并记录尿量变化。

4.结扎并剪断右侧迷走神经,用强度5~10V、频率30Hz、波宽2ms的电脉冲其末梢端0.5~2min,使血压降至40~50mmHg,观察并记录尿量变化。

5.静脉注射20%葡萄糖5ml,观察并记录尿量变化。于注射葡萄糖前后分别用尿糖试纸检测尿糖,观察有无尿糖。

6.静脉注射1∶10 000去甲肾上腺素0.5ml,观察并记录尿量变化。

7.静注注射呋塞米5mg/kg体重,观察并记录尿量变化。

8.静脉注射0.6%酚红0.5ml,用盛有10%NaOH溶液的培养皿收集尿液,计算从注射酚红起到尿中刚出现酚红所需的时间(酚红在碱性液中呈红色,可在培养皿下垫一白纸以便观察)。

9.静脉注射垂体后叶素2U,观察尿量变化。

【注意事项】

1.实验前多给家兔食用菜叶及水。

2.本实验需多次静脉注射,应注意保护兔耳缘静脉,静脉穿刺从远心端开始,逐次移向耳根。

3.行膀胱插管时,操作需轻柔,以免膀胱受刺激收缩,增加插管难度。

4.各项实验顺序的安排是:在尿流量增多的基础上进行减少尿生成的实验,在尿量少的基础上进行促进尿生成的实验。

思考题

1.本实验中哪些因素是通过肾小球滤过率而影响尿量的?它们各自的作用机制如何?

2.兔静脉注射20%葡萄糖5ml为什么会引起利尿?

3.凡使动脉血压升高的因素,是否均可引起尿量增加?

(陆佩蓓)

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