【摘要】：1．细胞退变 通常是由于涂片固定不及时，使细胞在干燥过程中氧化退变；或由于样本送检不及时，涂片前细胞已变性、自溶。
1．细胞退变 通常是由于涂片固定不及时，使细胞在干燥过程中氧化退变；或由于样本送检不及时，涂片前细胞已变性、自溶。解决方法：收到样本后要尽早制片，并保证涂片在潮干状态下固定或选择液基制片法；及时送检样本，不能及时送检时按9∶1的比例加入浓甲醛液（9份样本加1份浓甲醛）或95%乙醇等固定细胞。
2．细胞脱落 涂片上水分太多、细胞量太多或玻片不干净等均可导致涂片浸入95%乙醇固定时或染色的过程中大量细胞脱落。解决方法：离心后要把试管内的液体全部吸干，玻片要干净，涂片要薄而均匀。
3．细胞量少 宜用细胞离心机制片或1ml尖底离心管二次离心处理。
4．红细胞太多 离心后吸取上层沉淀物，加入乙醇冰醋酸液（25%乙醇95ml＋冰醋酸5ml），振荡后再离心，之后吸取沉淀物制片。
5．细胞收缩 涂片上液体太多，干燥后细胞容易收缩。解决方法：离心后要把试管内的液体全部吸干；其次，选择细胞收缩较小的固定液。
6．结晶 一是苏木素结晶，呈不规则形状。解决方法：一是及时过滤或更换苏木素染色液；二是点状结晶，成片或成簇分布，有时在细胞核上方，此为空气存留造成的结晶假象。预防方法：封片时，不要一次性从二甲苯中取出太多的涂片，宜根据当时的空气湿度、温度及个人封片速度，边取边封，一般每次取3～5张为宜。
7．涂片上的水珠 由于脱水不干净或封片环境太潮湿所造成。解决方法：重新脱水，再次封片。注意：特别要保证涂片在低浓度乙醇中的时间足够，脱水不干净的原因多是样本在低浓度乙醇内停留时间太短造成。
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