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考马氏亮蓝-染色法

时间:2022-02-14 理论教育 版权反馈
【摘要】:考马氏亮蓝G-250具有红色和青色两种色调,在酸性溶液中游离状态下为棕红色,当它通过疏水作用与蛋白质结合后,变成蓝色,最大吸收波长从465nm转移到595nm处,在一定的范围内,蛋白质含量与595nm的吸光度成正比,测定595nm处光密度值的增加即可进行蛋白质的定量。①考马氏亮蓝G-250染色液: 称取100mg考马氏亮蓝G-250溶解于50m L95%的乙醇中,加入100m L85%的磷酸,加入稀释到1L。③考马氏亮蓝G-250染色能力很强,特别要注意比色杯的清洗。

此方法是1976年Bradform建立的。染料结合法测定蛋白质的优点是灵敏度较高,可检测到微量蛋白,操作简便、快捷,试剂配制极简单,重复性好,但干扰因素多。

1. 原理

考马氏亮蓝G-250具有红色和青色两种色调,在酸性溶液中游离状态下为棕红色,当它通过疏水作用与蛋白质结合后,变成蓝色,最大吸收波长从465nm转移到595nm处,在一定的范围内,蛋白质含量与595nm的吸光度成正比,测定595nm处光密度值的增加即可进行蛋白质的定量。

2. 试剂和材料

①考马氏亮蓝G-250染色液: 称取100mg考马氏亮蓝G-250溶解于50m L95%的乙醇中,加入100m L85%的磷酸,加入稀释到1L。

②蛋白标准溶液(0.1mg/m L): 准确称取10mg牛血清白蛋白,在100m L容量瓶中加生理盐水至刻度,溶后分装,-20℃冰箱保存。

3. 分析步骤

1)标准曲线的制备

按表9-3操作,在试管中分别加入0μg,20μg,40μg,80μg,100μg蛋白标准溶液,用水补足到100μL,加入3m L的染色液,混匀后室温放置15min。

表9-3 考马氏亮蓝法标准曲线中试剂的添加量

在波长595nm比色,读出吸光度,以各管的蛋白标准浓度为横坐标,以其吸光度为纵坐标绘出标准曲线。

2)样品蛋白质测定

稀释蛋白样品溶液,准确吸取0.1m L蛋白样品加入样品管,同时以蛋白质标准溶液作为阳性对照(标准管),蒸馏水作为阴性对照(空白管),按表9-4操作。混匀后室温放置15 min,在595nm波长比色,计算蛋白质浓度。

表9-4 考马氏亮蓝法蛋白测定中试剂的添加量

4. 分析结果的表述

根据吸光度,查找标准曲线求得样品蛋白含量。

5. 说明与注意事项

①有些常用试剂在测定中会产生不同程度的干扰。Tris、巯基乙醇、蔗糖、甘油、EDTA及少量去垢剂有较少影响,而1%SDS,1% Triton X-100及1%Hemosol的干扰严重。

②显色结果受时间与温度影响较大,须注意保证样品与标准的测定控制在同一条件下进行。

③考马氏亮蓝G-250染色能力很强,特别要注意比色杯的清洗。颜色的吸附对本次测定影响很大。可将测量杯在0.1mol/LHCl中浸泡数小时,再冲洗干净即可。

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