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实验一水解酶活性的测定

时间:2022-10-19 百科知识 版权反馈
【摘要】:水稻萌发时淀粉酶活性最强,此时淀粉酶活性的大小与种子萌发力有关。以5分钟内每克样品水解产生麦芽糖的毫克数表示酶活性的大小。如测定α-淀粉酶和β-淀粉酶的活性,即为淀粉酶总活性。6.麦芽糖标准溶液:称取0.1 g麦芽糖,溶于少量蒸馏水中,然后定容到100 ml,取为1 mg/ml麦芽糖标准液。
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——以淀粉酶为例

【实验目的】

掌握淀粉酶活性测定的原理和操作方法。

【实验原理】

淀粉酶几乎存在于所有植物中,其中以禾谷类种子的淀粉酶活性较强。水稻萌发时淀粉酶活性最强,此时淀粉酶活性的大小与种子萌发力有关。

淀粉酶能将淀粉水解成麦芽糖,由于麦芽糖能将3,5-二硝基水杨酸试剂还原成橙红色的3-氨基-5-硝基水杨酸,且在一定范围内还原糖的浓度与反应液的颜色成正比,故利用比色法可求出麦芽糖的含量。以5分钟内每克样品水解产生麦芽糖的毫克数表示酶活性的大小。

植物淀粉酶可分为α-淀粉酶和β-淀粉酶两种,其中β-淀粉酶不耐热,在温度70℃以上易钝化:而α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6以下则发生钝化。根据以上特性,可分别测定这两种淀粉酶的活性。如测定α-淀粉酶和β-淀粉酶的活性,即为淀粉酶总活性。

【实验材料】

萌发3~4天的水稻种子。

【实验器材】

20 ml具塞试管、移液管、100 ml容量瓶、研钵、721型分光光度计、离心机、恒温水箱、离心管等。

【药品试剂】

1.石英沙。

2.1%淀粉溶液:称1 g可溶性淀粉,加入100 ml蒸馏水煮沸(临用时配制)。

3.pH5.6柠檬酸缓冲液:A.称取柠檬酸21g,溶解后定容到1000 ml;B.称取柠檬酸钠29.4 g,溶解后定容到1000 ml;量取A液55 ml与B液145 ml混匀,即为pH5.6的缓冲液。

4.0.4 mol/L氢氧化钠溶液。

5.3,5-二硝基水杨酸试剂:取1 g 3,5-二硝基水杨酸,溶于20 ml 2 mol/L氢氧化钠中,加入50 ml蒸馏水,再加入30 g酒石酸钾钠,待溶解后,用蒸馏水稀释至100 ml,盖紧瓶盖,勿使二氧化碳进入。

6.麦芽糖标准溶液:称取0.1 g麦芽糖,溶于少量蒸馏水中,然后定容到100 ml,取为1 mg/ml麦芽糖标准液。

【实验方法】

1.酶液的制备:称取去根萌发水稻种子2 g(含外壳),置研钵中,加0.5 g石英沙研磨成匀浆。用8 ml蒸馏水分次洗涤研钵,将匀浆转入离心管中,搅拌均匀后放置15~20分钟(间隔搅拌2~3次)。3500 r/min离心10分钟,将上清液转入25 ml容量瓶,用蒸馏水定容至刻度,得粗酶液。

2.α-淀粉酶与β-淀粉酶的酶促反应:取4支10 ml具塞刻度试管,编号,按表4-1加入各液。各管混匀后,置40℃水浴准确保温5分钟,取出后立即向3、4号试管中分别加入4 ml 0.4 mol/L NaOH终止酶活性。

表4-1       α-淀粉酶与β-淀粉酶的酶促反应

3.麦芽糖的测定:

(1)标准曲线制作:取20 ml刻度试管7支,编号,分别加入1 mg/ml麦芽糖标准液0、0.2、0.6、1、1.4、1.8和2 ml,然后各管加蒸馏水,使体积均达2 ml,再向各管加3,5-二硝基水杨酸试剂2 ml,置沸水浴中煮沸5分钟,取出后在自来水里冷却,用蒸馏水稀释至20 ml,摇匀后在520 nm波长下用分光光度计比色,以光密度值为纵坐标,麦芽糖含量为横坐标绘制标准曲线。

(2)样品的测定:取以上酶作用后的反应液及对照管中的溶液各2 ml,分别放入20 ml具塞刻度试管中,加入2 ml 3,5-二硝基水杨酸试剂,置沸水浴中准确煮沸5分钟,取出冷却,用蒸馏水稀释至20 ml,摇匀后在520 nm波长下用分光光度计比色,记录OD值,从麦芽糖曲线中查出相应麦芽糖含量,进行结果计算。

4.结果计算:

式中:

A为酶反应管中麦芽糖含量,即3号和4号管中麦芽糖毫克数的平均值。

A'为对照管中麦芽糖含量,即1号和2号管中麦芽糖毫克数的平均值。

【注意事项】

1.实验前应将所用研钵、试管、容量瓶等玻璃器皿冲洗干净,并注意移液管分别使用,以避免酶遇强碱失活。

2.注意控制好酶反应温度及pH值。

【思考题】

1.简述淀粉酶活性测定的原理。

2.测定植物种子萌发过程中淀粉酶活性的变化有何意义?

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