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苏木素-伊红染色

时间:2022-03-13 理论教育 版权反馈
【摘要】:苏木素-伊红染色法,是应用最广泛的组织病理学常规染色技术。用蒸馏水补足600ml,加入400mg碘酸钠充分混匀,苏木素染液呈紫红色。用醇溶伊红液染胞质后可不经水洗直接用95%乙醇脱水。苏木素染液使用一段时间后表面易出现亮晶状飘浮物,这可能是液体表面的过氧化物,必须过滤除去,以防沉渣污染组织切片。苏木素液一般染过300~400张切片后,着色力会减弱,着色不鲜艳,呈灰蓝色时应及时更换新液。

苏木素-伊红染色法(hematoxylin-eosin staining,HE),是应用最广泛的组织病理学常规染色技术。

(一)染色液配制

★Harris苏木素液配制

试剂】 苏木素1.0g,硫酸铝钾20g,氧化汞0.5g,无水乙醇10ml,蒸馏水200ml,冰醋酸8ml。

【方法】 先用蒸馏水加热溶解硫酸铝钾,用无水乙醇溶解苏木素再倒入已溶解的硫酸铝钾蒸馏水中,煮沸1min后,稍冷却,慢慢加入氧化汞0.5g,继续加热至染液变为深紫色,用纱布盖住瓶口,随即用冷水冷却,恢复至室温过滤备用。使用时再过滤后加入冰醋酸8ml。

★Mayer苏木素液改良配法

【试剂】

1.A液 苏木素2.0g,无水乙醇40ml。

2.B液 硫酸铝钾100g,蒸馏水600ml。

【方法】 稍加热使硫酸铝钾在水中溶解,将苏木素溶于无水乙醇中,再将A液与B液混合煮沸2min。用蒸馏水补足600ml,加入400mg碘酸钠充分混匀,苏木素染液呈紫红色。

★0.5%水溶伊红溶液配制

【试剂】 水溶伊红0.5~1.0g,蒸馏水100ml。

【方法】 先将水溶性伊红加入蒸馏水中,用玻璃棒搅拌至伊红搅起泡沫后过滤,每100ml加冰醋酸1滴即可。

★0.5%醇溶伊红液配制

【试剂】 醇溶伊红0.5~1.0g,95%乙醇100ml。

【方法】 先将伊红溶于乙醇中,用玻璃棒搅拌使伊红充分溶解后,每100ml加冰醋酸1滴。用醇溶伊红液染胞质后可不经水洗直接用95%乙醇脱水。

(二)染色

【基本步骤】

1.脱蜡 用二甲苯Ⅰ5~15min,然后用二甲苯Ⅱ5~15min,应达到完全脱蜡透明。

2.逐级降乙醇浓度水化

(1)无水乙醇Ⅰ(置换出二甲苯)1~3min。

(2)无水乙醇Ⅱ1~3min。

(3)95%乙醇1~3min。

(4)90%乙醇1~3min。

(5)85%乙醇1min。

(6)自来水洗1~2min。

3.着色

(1)苏木素液染核5~10min。

(2)自来水流水冲洗1min。

(3)1%盐酸乙醇分化1~20s。

(4)自来水流水冲洗1min。

(5)1%氨水返蓝5~20s。

(6)自来水流水冲洗或蒸馏水洗1~2min。

(7)0.5%伊红水溶液1~3min。

(8)自来水流水冲洗1~3s。

4.逐级升乙醇浓度脱水 若为醇溶伊红可直接入95%乙醇。

(1)80%乙醇1~3s。

(2)85%乙醇1~5s。

(3)90%乙醇30s。

(4)95%乙醇Ⅰ1~3min。

(5)95%乙醇Ⅱ1~3min。

(6)无水乙醇Ⅰ3~5min。

(7)无水乙醇Ⅱ3~5min。

5.透明处理

(1)苯酚-二甲苯3~5min。

(2)二甲苯Ⅰ3~5min。

(3)二甲苯Ⅱ3~5min。

(4)二甲苯Ⅲ3~5min。

6.封片 自二甲苯中取出染好的切片擦去周围的二甲苯,滴以适量的中性树胶,加盖盖玻片,盖玻片常从底边均匀推放,防止气泡。树胶多少适度不外溢。

【染色结果】 细胞核呈蓝色,胞质呈红色,红细胞呈橘红色,其他嗜伊红成分呈深浅不同红色,钙盐和各种微生物也可染成蓝色或紫蓝色。

【注意事项】 一张优质的HE染色切片观察起来色泽鲜艳、层次分明、结构清楚、易于辨认。但要制备一张优质切片如前所述必须保证组织的固定、脱水、透明、浸蜡,包埋和切片的各个环节符合标准要求。在此基础上注意HE染色时常遇到的问题:

(1)组织切片的脱蜡要彻底,否则,无论进行哪种染色都不会有理想的结果。要求脱蜡时间要充分,脱蜡剂使用过久应及时更换,若室温过低,可于温箱中进行脱蜡。

(2)用含有升汞液体固定的组织,其切片染色前应先行脱汞。

(3)固定时间长的组织要流水冲洗脱除甲醛色素或对切片进行脱色素。①石蜡切片脱蜡至水洗;②1%NaOH(1ml)与80%乙醇(99ml)混合液10min;③流水冲洗5min;④转入HE染色。

(4)苏木素染液使用一段时间后表面易出现亮晶状飘浮物,这可能是液体表面的过氧化物,必须过滤除去,以防沉渣污染组织切片。苏木素液一般染过300~400张切片后,着色力会减弱,着色不鲜艳,呈灰蓝色时应及时更换新液。

(5)染色的时间长短需依据染剂对组织的着色特点、室温条件、切片厚薄、固定液的类别、染液的新旧而进行调节。所以在染色时最好使用显微镜观察染色程度掌握时间。

(6)分化十分重要。分化步骤的准确也是染色成败的关键,若分化失当则必然引起染色不匀或过淡、过深等现象,因此分化后一定要镜检,观察胞核是否清晰,胞质呈淡白色。否则需再次分化,不然一旦复染后,组织会呈紫蓝色即“蓝盖红”现象。

(7)还原返蓝液不宜过浓,若碱性太强易使组织脱落故以淡为宜。

(8)伊红宜淡染,若过深可使胞核不清晰,影响观察。

(9)脱水、透明不彻底,组织表面会有一层雾状膜,应立即更换纯乙醇,退回重脱水。在潮湿的季节里应注意乙醇的浓度及时更换。

(10)染色后的组织切片要将组织四周的污染物痕迹擦掉,以免影响美观。

(11)载玻片自二甲苯中取出后,应立即用稠度适宜的中性树胶湿封载玻片,树胶要适量,盖玻片要轻轻放置,达到无气泡,无溢胶。盖玻片大小选择要合适、放正,标签清楚。不应将组织切片烤干或风干后再行封片,影响效果。

(12)染好的切片应妥为保存,更应避免日光照射,否则切片容易褪色

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