（一）取材
取材是制作切片程序中的首要步骤，取材不当，将直接影响病理诊断和科研工作的质量。组织标本的选用非常重要，不能随意地切取组织来制作组织切片，否则病理检验的结果不会令人满意。
（二）取材工具
取材刀具必须锋利。切取标本时不应该挤压和揉擦，以免人为损伤组织。
（三）标本的选取
切取标本的原则是求准而不是求量多。
（四）固定
固定是指将各种组织浸入防腐剂内，使细胞内的物质为不溶性。固定的作用是用一种方法将组织尽可能保持在它原来的形态，在制作切片过程中，固定是最为重要的步骤，一张优秀的组织学切片是建立在适当而完全的固定基础之上。
（五）常用固定液
1.福尔马林 是一种使用广泛、简便的固定剂，同时又是一种良好的标本保存液。经它固定的标本，可适应一些特殊染色。它的渗透性较强，固定均匀，能增加组织的韧性，组织收缩轻微，对脂肪、神经及髓鞘、糖等固定效果好，但经福尔马林固定时间长的组织，易产生黑色的沉淀。
2.多聚甲醛 最大特点是穿透力强，因而可较好地固定大块组织。并可保存蛋白质、脂类和一些糖原，但不能保存多糖。
3.戊二醛 其优点是对糖原、糖蛋白、微管、内质网和细胞基质等有较好的固定作用，对组织和细胞的穿透力比四氧化锇强，还能保存某些酶的活力，长时间的固定（几周甚至1～2个月）不会使组织变脆。缺点是不能保存脂肪，没有电子染色作用，对细胞膜的显示较差。
（六）固定液选择
组织制片技术上所使用的固定剂种类繁多，性能各有不同，有的为氧化剂，有的为还原剂；有的呈酸性，有的呈碱性；有的渗透力强，有的渗透力弱；有些易使组织收缩，有些则使组织发生轻微膨胀现象。应根据标本制作需要选取理想的固定液（本室肾活检常用10%福尔马林固定液、免疫组化标本常用4%多聚甲醛固定、电镜标本常用2.5%戊二醛固定）。
（七）固定液量
一般应为组织体积的5～10倍，最少不应少于5倍。
（八）固定注意事项
1.组织固定越新鲜越好。固定最好在组织离体后30s至1min。
2.组织固定，组织块不宜过大。凡是需要固定的组织，都不应该太大、太厚。
3.对不同类型的组织应适当合理地选择固定液。
4.组织固定，时间不宜太短，也不宜太长（本室常规标本固定8～24h）。
5.固定液的量要充分。
免责声明：以上内容源自网络，版权归原作者所有，如有侵犯您的原创版权请告知，我们将尽快删除相关内容。
